Способна к репликации днк или рнк. Репликация вирусных РНК молекул. Этапы репликации РНК генома вирусов. Как происходит заражение ВИЧ

Играют роль матриц . Новая цепь, синтезирующаяся на каждой из исходных цепей, идентична др. исходной цепи. Когда процесс завершается, образуются две идентичные двойные спирали , каждая из к-рых состоит из одной старой (исходной) и одной новой цепи (рис. 1). Таким образом от одного поколения к другому передается только одна из двух цепей, составляющих исходную молекулу ДНК ,-т. наз. полуконсервативный механизм репликации.

Репликация состоит из большого числа последоват. этапов, к-рые включают узнавание точки началу репликации, расплетание исходного дуплекса (спирали), удержание его цепей в изолированном друг от друга состоянии, инициацию синтеза на них новых дочерних цепей, их рост (элонгацию), закручивание цепей в спираль и терминацию (окончание) синтеза. Все эти этапы репликации, протекающие с высокой скоростью и исключит. точностью, обеспечивает комплекс, состоящий более чем из 20 ферментов и белков ,-т. наз. ДНК-репликазная система, или реплисома. Функцион. единица репликации-реплик он, представляющий собой сегмент (участок) хромосомы или внехромосомной ДНК , ограниченный точкой начала, в к-рой инициируется репликация, и точкой окончания, в к-рой репликация останавливается. Скорость репликации контролируется на стадии инициации. Однажды начавшись, репликация продолжается до тех пор, пока весь репликон не будет дуплицирован (удвоен). Частотд инициации определяется взаимод. спец. регуляторных белков с точкой начала репликации. Бактериальные хромосомы содержат один репликон: инициации в единств. точке начала репликации ведет к репликации всего генома . В каждом клеточном цикле репликация инициируется только один раз, Плазмиды и вирусы , являющиеся автономными генетич. элементами, представляют собой отдельные репликоны, способные к многократной инициации в клетке-хозяине. Эукариотич. хромосомы (хромосомы всех организмов , за исключением бактерий и синезеленых водорослей) содержат большое число репликонов, каждый из к-рых также однократно инициируется за один клеточный цикл .

Рис. 1. Схема полуконсервативного механизма репликации: А, Т, G и С-остатки пуриновых и пиримидиновых оснований (соотв. аденина , тимина , гуанина и цитозина); 1 -исходная цепь ДНК ; 2-новая цепь ДНК .

Начиная с точки инициации, репликация осуществляется в ограни-ченной зоне, перемещающейся вдоль исходной спирали ДНК . Эта активная зона репликации (т. наз. репликац. вилка) может двигаться в обоих направлениях. При однонаправленной репликации вдоль ДНК движется одна репликац. вилка. При двунаправленной репликации от точки инициации в противоположных направлениях расходятся две репликац. вилки; скорости их движения могут различаться. При репликации ДНК бактерии и млекопитающих скорость роста дочерней цепи составляет соотв. 500 и 50 нуклеотидов в 1 с; у растений эта величина не превышает 20 нуклеотидов в 1 с. Движение двух вилок в противоположных направлениях создает петлю, к-рая имеет вид "пузыря" или "глаза". Продолжающаяся репликация расширяет "глаз" до тех пор, пока он не включит в себя весь репликон.

В ходе репликации рост цепи осуществляется благодаря взаимод. дезоксирибонуклеозидтрифосфата с 3"-ОН концевым ну-клеотидом уже построенной части ДНК ; при этом отщепляется пирофосфат и образуется фосфодиэфирная связь. Рост полинуклеотидной цепи (рис. 2) идет только с ее З"-конца, т. е. в направлении 5" : 3" (см. Нуклеиновые кисло-ты). Фермент , катализирующий эту р-цию,-ДНК-полиме-раза (см. Полидезоксирибонуклеотид-синтетазы)-не способен начать матричный синтез на одноцепочечной ДНК , если нет хотя бы олигонуклеотидного биспирального участка (т. наз. затравочного олигонуклеотида) комплементарного матрице ; затравочным олигонуклеотидом во мн. случаях является не ДНК , а РНК .

Рис. 2. Направление роста дезоксирибонуклеотидных цепей при репликации; сплош ные линии - исходная ДНК , пунктирные - новые цепи ДНК (стрелки показывают на правлениеих роста); 1-репликац. вилка.

Энергия, затрачиваемая на образование каждой новой фосфодиэфирной связи в цепи ДНК , обеспечивается расщеплением фосфатной связи между a - и b -фосфатными группами нуклеозидтрифосфата.

ДНК-полимераза имеет один центр связывания нуклеозидтрифосфата, общий для всех четырех нуклеотидов . Выбор из среды нуклеотида , основание к-рого комплементарно очередному основанию матрицы , протекает без ошибок, благодаря определяющему влиянию ДНК-матрицы (исходной цепи ДНК). При нек-рых мутационных повреждениях структуры ДНК-полимеразы в ряде случаев происходит включение некомплементарных нуклеотидов .

В процессе репликации формальной ДНК на короткое время с вероятностью 10 -4 -10 -5 возникают редкие таутомерные формы всех 4 азотистых оснований нуклеотидов , к-рые образуют неправильные пары . Высокая точность репликации (вероятность ошибок не превышает 10 -9) обусловлена наличием механизмов, осуществляющих коррекцию (репарацию).

Репликац. вилка асимметрична. Из двух синтезируемых дочерних цепей ДНК одна строится непрерывно, а другая-с перерывами. Первую наз. ведущей, или лидирующей, цепью, а вторую-отстающей. Синтез второй цепи идет медленнее; хотя в целом эта цепь строится в направлении 3" : 5", каждый из ее фрагментов в отдельности наращивается в направлении 5" : 3" (рис. 3). Благодаря такому прерывистому механизму синтеза, репликация обеих антипараллельных цепей осуществляется с участием одного фермента-ДНК-полимеразы, катализирующего наращивание нуклеотидной цепи только в направлении 5" : 3".

Рис. 3. Схема механизма роста цепей ДНК при репликации: А-ведущая цепь, Б-отстающая цепь, В-фрагмент Оказаки.

В качестве затравок для синтеза фрагментов отстающей цепи служат короткие отрезки РНК , комплементарные матричной цепи ДНК . Эти РНК-затравки (праймеры), состоящие примерно из 10 нуклеотидов , с определенными интервалами синтезируются на матрице отстающей цепи из рибонуклеозидтрифосфатов в направлении 5" : 3" с помощью фермента РНК-праймазы. РНК-праймеры затем наращиваются дезоксинуклеотидами с 3"-конца ДНК-поли-меразой, к-рая продолжает наращивание до тех пор, пока строящаяся цепь не достигает РНК-затравки, присоединенной к 5"-концу предыдущего фрагмента. Образующиеся таким образом фрагменты (т. наз. фрагменты Оказаки) отстающей цепи насчитывают у бактерий 1000-2000 дез-оксирибонуклеотидных остатков; в животных клетках их длина не превышает 200 нуклеотидов .

Чтобы обеспечить образование непрерывной цепи ДНК из многих таких фрагментов, в действие вступает особая система репарации ДНК , удаляющая РНК-затравку и заменяющая ее на ДНК . У бактерий РНК-затравка удаляется нуклеотид за нуклеотидом благодаря 5" : 3"-экзонуклеазной активности ДНК-полимеразы. При этом каждый отщепленный рибонуклеотидный мономер замещается соответствующим дезоксирибонуклеотидом (в качестве затравки используется З"-конец синтезированного на старой цепи фрагмента). Завершает весь процесс фермент ДНК-лигаза, катализирующий образование фосфодиэфирной связи между группой З"-ОН нового фрагмента ДНК и 5"-фосфатной группой предыдущего фрагмента. Образование этой связи требует затраты энергии, к-рая поставляется в ходе сопряженного гидролиза пирофосфатной связи кофермента-никотинамид-адениндинуклеотида (в бактериальных клетках) или АТФ (в животных клетках и у бактериофагов).

Раскручивание двойной спирали и пространств. разделение цепей осуществляется при помощи неск. спец. белков . Т. наз. геликазы расплетают короткие участки ДНК , находящиеся непосредственно перед репликац. вилкой. На разделение каждой пары оснований расходуется энергия гидролиза двух молекул АТФ до аденозиндифосфата и фосфата . К каждой из разделившихся цепей присоединяется неск. молекул ДНК-связывающих белков , к-рые препятствуют образованию комплементарных пар и обратному воссоединению цепей. Благодаря этому нуклеотидные последовательности цепей ДНК оказываются доступными для репликативной системы. Др. специфич. белки помогают праймазе получить доступ к матрице отстающей цепи. В результате праймаза связывается с ДНК и синтезирует РНК-затравки для фрагментов отстающей цепи. Для формирования новых спира-,лей не требуется ни затрат энергии, ни участия к.-л. "закручивающего" фермента .

В случае кольцевого репликона (напр., у плазмиды) описанный процесс наз. q -репликацией. Т.к. кольцевые молекулы ДНК закручены сами на себя (суперспирализо-ваны), при раскручивании двойной спирали в процессе репликации они должны непрерывно вращаться вокруг собств. оси. При этом возникает торсионное напряжение, к-рое устраняется путем разрыва одной из цепей. Затем оба конца сразу же вновь соединяются друг с другом. Эту ф-цию выполняет фермент ДНК-топоизомераза. Репликация в этом случае обычно происходит в двух направлениях, т.е. существуют две репликац. вилки (рис. 4). После завершения репликации появляются две двухцепочечные молекулы , к-рые сначала связаны друг с другом как звенья одной цепи. При их разделении одно из двух колец временно разрывается.

Рис. 4. Один из механизмов репликации плазмиды (начало репликации обозначено точками); направления движения репликац. вилки показаны стрелками, образующиеся новые цепи ДНК-пунктиром.

Это – IV стадия репродукции вирусов: синтез вирусных белков и репликация нуклеиновых к-т.

1. РНК пикорнавирусов выполняет роль и-РНК, транслируется на рибосомы, служит матрицей для образования единого гигантского полипептида. Последний расщепляется на несколько белков, один из кот-х является полимеразой. Начинается репликация той же РНК, освобождённой от рибосом.

2. РНК других вирусов служит матрицей, на кот-й транскрибируется и-РНК. Она транслируется на рибосомы, образуются определённые вирусные белки, один из кот-х - полимераза. Далее происходит репликация вирусной РНК, причём вначале образуется форма из 2-х нитей.

3. У онкогенных РНК-содержащих вирусов синтез идёт иначе. С матрицы РНК образуется ДНК-копия, имеющая 1 нить ДНК. В этом процессе участвует обратная транскриптаза, кот-я есть в вирионе. Затем идёт репликация этой нити ДНК, образуется 2 нити. На матрице этой ДНК-копии синтезируются молекулы РНК.

54. Какая разница между (+) и (-) вариантами 1-нитчатых РНК геномов?

Вирусные РНК делятся на + нити и - нити РНК.

+РНК представлены одиночными цепочками, имеющими характерные «шапочки» на концах для распознавания рибосом. К этой группе относят РНК, способные непосредственно транслировать генетическую информацию на рибосомах заражённой клетки, то есть выполнять ф-и м-РНК. Ф-и +нитей : служат м-РНК для синтеза структурных белков, матрицей для репликации РНК, упаковываются в капсид с образованием дочерней популяции.

-РНК не способны транслировать генетическую информацию на рибосомах. Служат матрицей для синтеза м-РНК.

Сущность радиоиммунного метода.

Используют очищенные и концентрированные Аг и АТ, меченные радиоизотопом (йодом).

Для выявления АТ – к исследуемой сыворотке добавляют меченый Аг. Титр АТ в сыворотке устанавливают по убыли свободного меченого Аг.

Для выявления Аг – исследуемый материал смешивают с антисывороткой, затем вносят гомологичный меченый Аг. Если меченый Аг остаётся свободным, реакция положительная , так как исследуемый Аг связался с сывороткой. Если меченый Аг уменьшается, это означает, что он взаимодействует с сывороткой – реакция отрицательная .

Используют для диагностики вирусного гепатита.

Как происходит заражение ВИЧ?

ВИЧ-инфекция – типичный антропоноз, у животных воспроизвести заболевание не удаётся. Резервуар вируса – инфицированный человек. Пути передачи:

1. Половой – через повреждения слизистых.

2. Использование одних игл и шприцев наркоманами.

3. Гемотрансфузионный – переливание крови и её препаратов.

4. Передача с донорскими органами.

ВИЧ чувствителен к д-ю высоких t°, этанола, эфира. В биологическом материале при комнатной t° жизнеспособен несколько дней.

Какие клетки поражает ВИЧ и какой рецептор имеют эти клетки? Мех-м развития ВИЧ.

Мишени для ВИЧ – Т-хелперы, моноциты, макрофаги, клетки микроглии.

Патогенез поражений: селективное поражение CD4 + -клеток, так как вирус использует CD4 как рецептор. В патогенезе 4 стадии:

I. Апоптоз – «запрограммированная» смерть клеток – при взаимодействии вирусов с рецепторной системой макрофагов нарушается «распознавание» вируса как чужеродного Аг.

II. Образование синцитиев – вирусы выходят в кровь и внедряются в новые незаражённые лимфоциты. Здоровые лимфоциты прилипают к поражённым. Активность лимфоцитов снижается под д-ем токсинов, образующихся при гибели клеток.

III. Аутоиммунные реакции – появление вирусных гликопротеинов на мембранах Т-хелперов приводит к активации Т-киллеров. Иммунная система не может противостоять даже сапрофитной флоре. Возникают «оппортунистические» инфекции.

IV. Инфицирование клеток-предшественников – при нормальном иммунитете эти клетки разрушаются, а в условиях иммунодефицита – активно размножаются. Возникают болезни злокачественного роста – саркома Капоши.

«Оппортунистические» инфекции – заболевания, вызванные микроорганизмом, способным поражать только индивидуумы с ослабленным иммунитетом.

Как устроен ВИЧ?

ВИЧ входит в состав ретровирусов. Характерно : уникальное строение генома и наличие обратной транскриптазы. Обратная транскриптаза обеспечивает обратную направленность потока генетической информации – от РНК к ДНК (отсюда название).

Геном : 2 идентичные молекулы 1-нитевой несегментированной +РНК.

При репродукции образуются промежуточные продукты ДНК – особенности размножения ретровирусов . Выделяют ВИЧ-I и ВИЧ-II.

Зрелые вирионы : сферическая форма, d = 120 нм, в геноме 2 нити +РНК, капсид, суперкапсид из двойного липидного слоя, кот-й пронизывают гликопротеиновые шипы. Эти шипы взаимодействуют с молекулами CD4 на мембранах клетки.

Ниже публикуется статья лауреата Большой золотой медали им. М.В. Ломоносова 2002 г., которая написана на основе доклада, прочитанного 15 мая 2002 г. на Общем собрании Российской академии наук при вручении этой награды.

РИБОНУКЛЕИНОВЫЕ КИСЛОТЫ
КАК ЦЕНТРАЛЬНОЕ ЗВЕНО ЖИВОЙ МАТЕРИИ

А. С. Спирин
Спирин Александр Сергеевич - академик, советник РАН.

В 30-х годах прошлого столетия моему учителю Андрею Николаевичу Белозерскому удалось поставить последнюю точку в затянувшихся спорах о принадлежности двух разных типов нуклеиновых кислот - рибонуклеиновой (РНК) и дезоксирибонуклеиновой (ДНК) - растительному или животному царствам живого мира. Тогда о генетических функциях обеих нуклеиновых кислот еще ничего не знали. Долгое время РНК считалась компонентом растений, включая грибы, а ДНК рассматривалась как типичный компонент животных клеток, как "животная нуклеиновая кислота", чаще всего называвшаяся тогда "тимонуклеиновой кислотой" (от thymus - латинского названия зобной железы, из которой ее выделяли). Затем оказалось, что РНК, наряду с ДНК, широко распространена у животных. Однако относительно наличия ДНК в растительных клетках существовали большие сомнения: прямых данных не было, а единственное косвенное указание - положительная цветная цитохимическая реакция Фейльгена, которую обнаруживали ядра растительных клеток, - не могло считаться надежным свидетельством. А.Н. Белозерским был сначала выделен и идентифицирован тимин - самый характерный компонент ДНК - из семян гороха , а затем сама ДНК была препаративно выделена из семян конского каштана . Так установилось окончательное понимание того, что и РНК, и ДНК - два универсальных типа нуклеиновых кислот, присущих всем царствам живого мира.

В 40-х годах на основе различных цитологических и биохимических наблюдений и анализов стало складываться представление, что ДНК, постоянно локализующаяся в ядрах клеток, в их хромосомах, самым тесным образом связана с аппаратом наследственности, а РНК - это обязательный компонент клеточной цитоплазмы, ответственный за биосинтез белка [ , ]. Прямые эксперименты Т.Эйвери с сотрудниками доказали, что чистая, изолированная ДНК может быть носителем наследственных признаков организма. (Более подробно об этих экспериментах, а также о составе и строении ДНК см. в обзоре ). Все большее число исследователей, в первую очередь биохимиков и цитологов, начинали склоняться к мысли, что ДНК или ее комплексы с белками могут быть основными носителями генетической информации, а РНК - посредником, воспринимающим эту информацию от ДНК и реализующим ее в виде биосинтеза белков.

К началу 50-х годов Э. Чаргафф установил факт видовой специфичности состава ДНК, показав, что соотношения четырех сортов ее мономеров - гуанилового (G), аденилового (А), цитидилового (С) и тимидилового (Т) - различаются у разных видов организмов [ , ]. Этот факт прямо соответствовал предполагавшейся генетической роли ДНК. При этом были найдены также удивительные закономерности в нуклеотидном составе ДНК, названные "правилами Чаргаффа": независимо от видовых различий, во всех ДНК количество G было равно количеству С, а количество А -количеству Т (G = С, А = Т). В 1953 г. Дж. Уотсон и Ф. Крик, используя эти экспериментальные данные по химическому составу ДНК, а также результаты рентгеноструктурных анализов ориентированных нитей ДНК, указавших на спиральный характер укладки полимерных молекул ДНК [ , ], предложили модель макромолекулярной структуры ДНК . Это была двойная спираль, где две полимерные нити ДНК закручены друг относительно друга вокруг общей оси и удерживаются вместе за счет парных взаимодействий G с С и А с Т. Их догадка оказалась гениальной: непосредственно из структуры вытекал механизм ее точного воспроизведения , что впервые дало объяснение воспроизведению себе подобных структур в процессах размножения и наследственности. Так полвека назад родилась новая наука - молекулярная биология.

Естественно, что молекулярная биология началась с эры ДНК. ДНК была провозглашена "главной молекулой жизни", "нитью жизни", началом начал и основой всего живого. Белки, ранее рассматриваемые как основной компонент живых систем, теперь "увольнялись" со всех руководящих позиций и "назначались" на второстепенные роли катализаторов, обслуживающих существование ДНК. Роль другого типа нуклеиновых кислот - РНК - сводилась к функции посредников, производимых на матрицах ДНК и направляющих синтез белков. Схема "ДНК->РНК -> белок" с необратимостью процессов передачи информации, обозначаемых стрелками, получила название "центральной догмы молекулярной биологии" (подробнее см. [ ,13]).

РНК: РЕПЛИКАЦИЯ НА ДНК И ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ФУНКЦИЯ

В основе воспроизведения (репликации) структуры ДНК лежит так называемый принцип комплементарности: в двойной спирали две полимерные цепи ДНК связаны бок о бок водородными связями за счет образования пар G-C, C-G, А-Т и Т-А (см. , рис. 2 и 3). Если две цепи двойной спирали расходятся, то на каждой из них может строиться (полимеризоваться) новая комплементарная цепь, так что напротив G исходной цепи установится С новой цепи, напротив С старой цепи - G новой цепи, напротив А-Т, а напротив Т-А; в результате получатся две дочерние двойные спирали, полностью идентичные исходной - материнской (см. , рис. 4).

РНК химически подобна ДНК. В обоих случаях это линейные, неразветвленные полимеры нуклеотидов с пентозо-фосфатным остовом и четырьмя типами азотистых (пуриновых и пиримидиновых) оснований в качестве боковых групп (рис. 1). Существует только два небольших отличия цепи РНК от одиночной цепи ДНК:

1) пятиуглеродный сахар (пентоза) в РНК представлен рибозой, а в ДНК - его производным 2"-дезоксирибозой;

2) один из двух пиримидиновых нуклеотидов в РНК представлен уридиловым остатком (U) вместо его метилированного производного Т в ДНК.

Тот же вышеупомянутый принцип комплемен-тарности обеспечивает механизм репликации РНК на матрице ДНК. Разница лишь в том, что РНК полимеризуется только на одной из двух разошедшихся цепей двойной спирали ДНК (рис. 2). Разумеется, при синтезе РНК напротив А цепи ДНК становится уридиловый рибонуклеотид (U) вместо тимидилового дезоксирибонуклеотида (Т) при синтезе ДНК. Реплицирующаяся цепь РНК, таким образом, является точной копией противоположной цепи ДНК, с заменой Т на U. Процесс репликации сопровождается отделением цепи РНК от ДНК. В результате такой репликации РНК образуется как гибкий одноцепочечный полимер в отличие от жесткой двойной спирали ДНК.

Будучи копиями определенных функциональных отрезков цепи ДНК - генов, цепи РНК призваны служить матрицами для синтеза другого типа полимеров - полипептидных цепей белков. Так как белки состоят из двадцати разных сортов мономеров (аминокислот), а РНК - только из четырех сортов мономеров (нуклеотидов), детерминация аминокислотной последовательности полипептидной цепи нуклеотидной последовательностью РНК требует того, чтобы каждая аминокислота кодировалась комбинацией из нескольких - не менее трех - нуклеотидов. Именно триплетный код был сначала постулирован на основании теоретических соображений, а затем и доказан экспериментально. За РНК прочно закрепилась генетическая роль посредника между генами и белками: с одной стороны, РНК представлялась как совокупность копий генов, то есть копий отрезков ДНК, а с другой - как непосредственные матрицы, последовательности нуклеотидных триплетов которых декодируются в аминокислотные последовательности полипептидных цепей в процессе синтеза белков.

Исходя из этих представлений, в 1956 г. мной, тогда аспирантом А.Н. Белозерского в Институте биохимии АН СССР, была начата работа по экспериментальной проверке соответствия ДНК и РНК. Сначала мы показали, что нуклеотидный состав (соотношение четырех сортов нуклеотидов) ДНК может очень сильно различаться у разных видов организмов, в частности у бактерий разных таксономических групп. Далее мы исходили из того, что если РНК - копия ДНК, то нуклеотидный состав этих двух типов нуклеиновых кислот должен совпадать или, по крайней мере, быть сходным. Наши анализы дали совершенно неожиданный результат: при сильных вариациях состава ДНК соотношения нуклеотидов в тотальной РНК разных видов оказались удивительно консервативны (табл.) . Вместе с тем статистический анализ этих данных показал, что имеется надежная положительная корреляция состава РНК с составом ДНК, хотя и при малой величине регрессии (рис. 3) . Данные были интерпретированы так, что на фоне основной массы эволюционно консервативной, похожей у разных видов РНК существует относительно малая фракция видоспецифической РНК, копирующей ДНК.

В 1959 г. Ф. Крик так описал этот ранний период истории молекулярной биологии:

"Проблема кодирования прошла к настоящему времени три фазы. На первой - фазе блужданий - были сделаны различные предположения, но ни одно не было достаточно точным, чтобы подвергнуться опровержению. Вторая фаза - оптимистическая - была инициирована в 1954 году Гамовым, который был достаточно смелым, чтобы предложить довольно точный код. Это стимулировало целый ряд исследователей, стремившихся показать, что его предположения неверны, и тем самым они несколько подняли точность мышления в этой области. Третья фаза - фаза замешательства - была инициирована статьей Белозерского и Спирина в 1958 году... Данные, представленные там, показывали, что наши представления по многим важным аспектам были чересчур упрощенными" .

Таким образом, в работе 1956-1958 гг. нами были получены указания на два новых обстоятельства: во-первых, на наличие в клетках основной массы РНК, не являющейся посредником между генами и белками, то есть, по-видимому, негенетической РНК, и, во-вторых, на существование ДНК-подобной - генетической - РНК в виде сравнительно небольшой фракции, которой и могла быть приписана роль посредника между генами и белками.

Несколько ранее было установлено, что ДНК-подобная РНК образуется при заражении бактерий вирусом (бактериофагом): внедрение нового генетического материала - ДНК вируса - в клетку индуцировало синтез РНК, подобной по составу вирусной ДНК и, очевидно, определяющей синтез вирусных белков . В нашей работе было впервые показано, что фракция ДНК-подобной РНК есть нормальный компонент обычных, не зараженных клеток, где она, по-видимому, выполняет функцию переноса генетической информации от своей ДНК, чтобы определять синтез своих белков. Позднее эта фракция РНК получила название messenger RNA , матричной РНК (мРНК), или информационной РНК.

Дальнейшие исследования мРНК в моей группе (с 1960 г. - лаборатории) в Институте биохимии АН СССР и переход от изучения микроорганизмов к высшим организмам привели еще к одному открытию. Оказалось, что в клетках высших организмов - животных и высших растений - мРНК в свободном виде не существует, она представлена в виде рибонуклеопротеидных частиц (мРНП-частиц), названных нами информосомами [ , ].

Этот новый тип внутриклеточных частиц характеризовался рядом уникальных физико-химических свойств, и в частности, постоянным соотношением структурного белка и мРНК со значительным преобладанием белкового компонента. Роль нуклеопротеидной формы существования мРНК в клетках высших организмов в дальнейшем изучалась многими исследователями в связи с механизмами регуляции белкового синтеза на уровне трансляции. Эти работы дали ключ к пониманию ряда молекулярных механизмов оогенеза, сперматогенеза и раннего эмбриогенеза, клеточной дифференцировки и морфогенеза, эритропоэза и других процессов в жизнедеятельности многоклеточных существ, включая человека (см. обзоры [ , ]).

СТРУКТУРНАЯ РНК

После 1958 г. главные усилия моей группы были направлены на изучение консервативной, негенетической РНК, составляющей основную часть тотальной клеточной РНК. Быстро выяснилось, что преобладающая ее часть (около 90%) представляет собой компонент рибосом - внутриклеточных рибонуклеопротеидных частиц, являющихся молекулярными "фабриками" по производству белков. В серии блестящих работ английских, французских и американских исследователей [ - ] было доказано, что рибосомы и РНК рибосом сами не несут генетической информации для синтеза белков, а служат универсальным, неспецифическим аппаратом, который должен быть программирован информационной РНК (мРНК), чтобы синтезировать специфические, детерминированные соответствующими генами белки.

Первые же исследования рибосомных РНК в нашей лаборатории показали, что это - крупные макромолекулы (молекулярный вес порядка 10 6 ), каждая из которых представляет собой одну ковалентно-непрерывную полинуклеотидную цепь [ , ] в противоположность выдвинутому ранее представлению о субъединичном характере строения молекул рибосомных РНК . Несколько ранее при изучении высокополимерной биологически активной (инфекционной) РНК из вируса табачной мозаики нам удалось обнаружить ее способность к формированию вторичной и третичной структур, то есть к складыванию и сворачиванию ее полинуклеотидной цепи в структуры с ближними и дальними внутрицепными взаимодействиями [ ,30]. Подобное же поведение оказалось возможным продемонстрировать и в случае рибосомных РНК в растворе [ , ]. В совокупности исследования физико-химических свойств и структурных характеристик изолированных высокополимерных РНК в растворе, выполненные в 1958-1962 гг., привели к формулированию следующих общих принципов их пространственной организации:

РНК, в отличие от ДНК, - одноцепочечный полимер",

РНК формирует вторичную структуру - набор коротких спиральных участков - в основном за счет антипараллельного комплементарного спаривания смежных отрезков цепи;

РНК способна образовывать третичную структуру за счет дальних комплементарных взаимодействий внутри цепи и межспиральных взаимодействий;

Высокополимерная РНК способна сворачиваться в компактные частицы;

РНК обладает значительной конформационной подвижностью (рис. 4).

Принцип формирования компактных структур высокополимерными РНК получил подтверждение и дальнейшее развитие в цикле работ Института белка АН СССР, организованного мной и моими коллегами в 1967 г. в Пущине. В электронно-микроскопических исследованиях рибосомных РНК, проведенных В.Д. Васильевым совместно с сотрудниками моей лаборатории, было впервые продемонстрировано, что в соответствующих условиях РНК образуют компактные частицы, специфические по форме, в зависимости от типа РНК, и форма компактно свернутой РНК определяет общую морфологию рибосомной частицы [ , ]. Рибосома включает два типа высо-кополимерных РНК: так называемую 16S, или малую рибосомную РНК (мол. вес около 0.6 х 10 6 ), и 23S, или большую рибосомную РНК (мол. вес около 1.2 х 10 6 ). Каждая из них, совместно с рибосомными белками, входит в состав двух разных по размеру и форме рибонуклеопротеидных частиц, называемых рибосомными 30S и 50S субъединицами. Объединившись (ассоциация рибосомных субъединиц), эти две частицы образуют полную функциональную рибосому. Электронная микроскопия показала, что 16S и 23S РНК, без всяких белков, сами организуют свое сворачивание в компактные частицы специфической формы, похожие на соответствующие рибосомные субъединицы (см. , рис. 4). Отсюда следовал принципиально важный вывод о структурообразующей функции РНК. Ранее и способность к специфическому самосворачиванию в компактные глобулы, и функции структурообразования внутриклеточных частиц приписывались только белкам.

Этим наблюдениям предшествовали наши опыты по индуцированным структурным превращениям рибосом типа разворачивания рибосомных частиц в рибонуклеопротеидные тяжи без потери рибосомных белков [ , ], а также разборки и обратной самосборки рибосомных белков на ядре РНК (реконструкции рибосом) , доказавшие, что при формировании рибосомных частиц РНК служит каркасом. Изучение нейтронного рассеяния рибосом совместно с группой И.Н. Сердюка в Институте белка АН СССР (см. ) дало дополнительные физические свидетельства о взаимном расположении РНК и белков в рибосомных частицах. В целом все это позволило сформулировать три общих принципа структуры рибосом:

рибосома построена из двух неравных разделяемых субчастиц - малой и большой рибосомных субъединиц;

Две специфически самосворачиваемые высокополимерные РНК - рибосомные РНК - образуют компактные структурные ядра двух рибосомных субъединиц;

Разнообразные рибосомные белки и их группы специфически собраны на каркасе рибосомных РНК, в основном на периферии этих компактных ядер.

Рибосомы и их обе субъединицы были успешно кристаллизованы нами в Институте белка и совместной немецко-израильской группой (Г. Виттманн -ФРГ и А. Йонат - Израиль) еще в 80-х годах, после чего в нескольких лабораториях началось кристаллографическое рентгеноструктурное исследование с целью расшифровки их атомной структуры. В 1999-2001 гг. структура бактериальной рибосомы и ее субъединиц была определена с разрешением от 5.5 до 2.4 А в зависимости от объекта исследования американскими, английской и немецко-израильской группами исследователей .

Помимо информации о детальном устройстве рибосомы, полученные результаты полностью подтвердили вышеуказанные общие принципы ее структуры, и в первую очередь тот факт, что форма субъединиц определяется их компактно свернутой РНК, а рибосомные белки располагаются на периферии этих ядер. Полная рибосома - ассоциат двух разных, компактно и специфически свернутых РНК, лишь на части поверхности "декорированной" белками. Важно, что именно рибосомная РНК, как оказалось, образует главные функциональные центры рибосомы и определяет принципиальное устройство рибосомы как молекулярной машины, осуществляющей синтез белка по программе, записанной в мРНК. Вполне вероятно, что на заре жизни рибосома состояла только из РНК, а рибосомные белки - это более позднее эволюционное приобретение для стабилизации рибосомной РНК или улучшения ее функции.

ВСЕМОГУЩАЯ РНК

Способность РНК к формированию компактных трехмерных структур, как и в случае белков, дает основу для специфического взаимодействия с другими молекулами - макромолекулами и малыми лигандами. Для молекул РНК, свернутых в специфическую глобулу, благодаря чему на ее поверхности создается уникальный пространственный узор, приходится допустить возможность функции молекулярного узнавания, как и у белков. В свою очередь, высокоизбирательное узнавание приводит к возможности специфического катализа химических реакций на манер ферментативного катализа реакций белками.

Пожалуй, первыми известными "узнающими" РНК можно считать так называемые "транспортные" РНК, или тРНК, выполняющие адапторную роль в биосинтезе белка (см. , рис. 1). Эти сравнительно небольшие РНК (мол. вес около 30000) представляют собой компактно свернутые молекулы с однотипной пространственной структурой (см. , рис. 3). Их назначение - перенос аминокислот из свободного состояния в состав синтезируемой рибосомой полипептидной цепи белка. Для выполнения этой задачи тРНК должна поочередно и очень избирательно взаимодействовать с целым рядом макромолекулярных структур в клетке: сначала с белком-ферментом (аминоацил-тРНК-синтетазой), несущим определенную активированную аминокислоту, затем, неся на себе ковалентно присоединенную аминокислоту, с другим белком (фактором элонгации EF-Tu), вместе с которым она поступает в рибосому, и потом одновременно с рибосомной РНК и мРНК в рибосоме. Хотя на этом пути, несомненно, реализуются функции специфического узнавания молекулами тРНК других макромолекул, долгое время все же молчаливо принималось, что основную роль играет узнавание тРНК со стороны белков - ферментов, факторов трансляции и рибосомных белков, но не наоборот.

Английский ученый Э. Кандлифф был первым, кто четко и определенно заявил о способности структурированных участков рибосомной РНК специфически узнавать малые лиганды ненуклеиновой и небелковой природы. Он представил экспериментальные данные в пользу избирательного взаимодействия (связывания) именно участков свернутой РНК, а не белков, с рядом антибиотиков рибосомного действия - тиострептоном, эритромицином, аминогликозидами (стрептомицином, канамицином, неомицином) . Через 10 лет другими учеными были представлены прямые структурные данные о специфическом связывании аминогликозидных антибиотиков районом малой (16S) рибосомной РНК (см. также обзор ).

Окончательное признание за РНК способности узнавать самые разнообразные молекулы и весьма специфично взаимодействовать с ними пришло благодаря аптамерам - небольшим по размерам синтетическим РНК, получаемым путем отбора из многих вариантов нуклеотидных последовательностей с помощью процедур так называемой "бесклеточной эволюции", "эволюции в пробирке" [ , ]. Оказалось, что можно отобрать и размножить РНК, обладающие способностью избирательно связывать практически любой вид молекул, начиная от низкомолекулярных органических соединений и кончая различными индивидуальными пептидами и белками (см. обзоры [ , ]). Другими словами, РНК, как и белки, действительно в полной мере могут обладать функцией специфического молекулярного узнавания.

Еще до этих исследований, в начале 80-х годов прошлого века, в лабораториях Т. Чека и С. Олтмана в США было сделано сенсационное открытие, осуществившее революцию в биохимии и молекулярной биологии: было показано, что РНК может быть специфическим катализатором биохимических реакций [ ,47]. В течение всей предшествующей истории биохимии на протяжении десятилетий утверждалось, что биохимический катализ - "прерогатива" исключительно белков-ферментов. Поэтому и все теории происхождения жизни вынуждены были исходить из первичности белков как макромолекул, абсолютно необходимых для возникновения биохимического метаболизма (обмена веществ). Открытие каталитической функции РНК перевернуло все прежние представления об исключительной роли белков не только в возникновении жизни, но и в понимании самого явления жизни.

По аналогии с белками-ферментами - энзимами - каталитические РНК были названы рибозимами. По-видимому, почти все рибозимы, естественно существующие в живой природе в клетках современных организмов, так или иначе участвуют в процессах, связанных с превращениями полинуклеотидных цепей самих РНК. Однако оказалось возможным создавать и искусственные рибозимы с более широким спектром катализируемых реакций . Кроме того, как выясняется из всей совокупности данных по структуре рибосом и особенностей катализируемой рибосомой реакции образования пептидных связей в процессе биосинтеза белка, каталитический центр этой реакции (пептидил-трансферазный центр рибосомы) формируется определенным доменом большой рибосомной РНК, без принципиального участия рибосомных белков, то есть имеет рибозимную природу [ ,50].

Итак, именно после открытия каталитической функции РНК поменялась парадигма, и взоры биологов обратились к РНК. В самом деле, молекулы РНК способны делать все то, что делают белки: складываться в специфические структуры и определять формообразование биологических частиц, с большой точностью узнавать другие макромолекулы и малые лиганды и взаимодействовать с ними, наконец, осуществлять катализ ковалентных превращений узнаваемых молекул. Конечно, белки делают все это более эффективно и разносторонне, чем РНК. Но зато белки в принципе "не умеют" самовоспроизводиться - не существует никаких собственных белковых механизмов для воспроизведения их структуры, кроме как через РНК. В то же время РНК содержит все необходимые структурные предпосылки для точного воспроизведения ее собственной структуры.

РНК - близкий аналог ДНК, современного "вещества наследственности". Структурно ничто не мешает ей образовывать двойные спирали по типу ДНК, с полным соблюдением принципа комплементарности за счет формирования пар G-C, C-G, A-U и U-A между двумя полирибонуклеотидными цепями. В таком случае и воспроизведение (репликация) РНК на РНК представляется вполне разрешенным процессом. Действительно, хорошо известно, что двойные спирали РНК существуют в природе, и в первую очередь - в качестве самостоятельных РНК-геномов у некоторых вирусов (например, реовирусов и ротавирусов животных и человека). Вообще геномы в виде РНК, а не ДНК довольно распространены среди вирусов как животных, так и растений, а также бактериальных вирусов (бактериофагов), но в подавляющем большинстве случаев их геномная РНК представлена одной цепью РНК, на которой лишь после попадания вируса в клетку строится комплементарная цепь.

Так или иначе, вирусология давно доказала наличие таких же генетических репликативных функций у РНК, какие свойственны ДНК в клеточных организмах.

По-видимому, современные клеточные организмы не могли бы существовать без генетического "единоначалия" ДНК, и на самостоятельное воспроизведение РНК эволюцией был наложен строгий запрет, иначе происходила бы дерегуляция генной активности в организмах, нарушение контролируемого генами баланса продуктов и процессов в клетке и полная дезорганизация жизни. Тем не менее репликация РНК на РНК в специальных случаях может осуществляться в нормальных клетках. Об этом свидетельствуют самые последние открытия новых классов малых негенетических РНК в клетках животных и растений - так называемых интерферирующих РНК (siRNA) и микpoPHK (miRNA) - с регуляторной и антивирусной активностью: функционирование и воспроизведение этих РНК требует их самостоятельной репликации .

МИР РНК - ДРЕВНИЙ И СОВРЕМЕННЫЙ

Таким образом, РНК представляется наиболее самодостаточным веществом живой материи. Она принципиально способна выполнять все или почти все функции, которые свойственны белкам, включая формообразование и биохимический катализ, и в то же время может быть полноценным генетическим веществом с его репли-кативной и кодирующей функциями . Осознание этих фактов и привело биологов, химиков и геологов к гипотезе о древнем "мире РНК", который эволюционно предшествовал нашей нынешней ДНК-РНК-белковой жизни (подробнее см. ). В мире РНК не было ни белков, ни ДНК, а лишь ансамбли различных молекул РНК, выполняющих разные вышеперечисленные функции. Это были, скорее всего, бесклеточные системы. Формирование клеточных структур, безусловно, требует участия, по крайней мере, белков и липидов, которых еще не было. Компартментализация ансамблей РНК в виде коацерватных капель также была маловероятна, по причине отсутствия полипептидов, полисахаридов и других полимеров, способных к коацервации. Тем не менее, для того чтобы каждый ансамбль РНК мог существовать как система, наследовать приобретенные признаки, полезные для всей системы, и эволюционировать, его РНК-репликазы, лиганд-связывющие РНК, РНК-синтетазы и продукты синтезов должны быть, очевидно, как-то объединены в пространстве. Поэтому в большинстве теорий происхождения жизни возникновение ограничивающих мембран или хотя бы поверхностей раздела фаз постулируется необходимым условием начала эволюции, в том числе эволюции ансамблей РНК (например, см. ).

Возможна, однако, и альтернатива, на мой взгляд, даже более вероятная. Около десяти лет назад в Институте белка РАН моим учеником А.Б. Четвериным с сотрудниками была экспериментально показана способность молекул РНК формировать молекулярные колонии на гелях или других твердых средах, если на этих средах им были предоставлены условия для репликации [ ,55] (рис. 5). Смешанные колонии РНК на твердых или полутвердых поверхностях и могли быть первыми эволюционирующими бесклеточными ансамблями, где одни молекулы выполняли генетические функции (репликацию молекул РНК всего ансамбля), а другие формировали необходимые для успешного существования структуры (например, такие, которые адсорбировали нужные вещества из окружающей среды) или были рибозимами, ответственными за синтез и подготовку субстратов для синтеза РНК. Такая бесклеточная ситуация создавала условия для очень быстрой эволюции: колонии РНК не были отгорожены от внешней среды и могли легко обмениваться своими молекулами - своим генетическим материалом. Легкое распространение молекул РНК через среду, в том числе атмосферную, также было продемонстрировано в прямых экспериментах . Более того, как показали недавние эксперименты той же группы исследователей, молекулы РНК при столкновениях в водной среде могут спонтанно обмениваться кусками, то есть обладают способностью к неэнзиматической рекомбинации .

Рис. 5. Колонии реплицирующихся молекул РНК на агарозном геле [ , ]
Слева - колонии РНК, выросшие на закрытой чашке Петри
в течение одного часа при температуре 25°С.
Справа - колонии РНК выросшие на открытой чашке Петри в тех же условиях
(заражение молекулами РНК из воздуха)

Именно такие условия постулировал К. Вуз для возникновения Универсального Предшественника живых существ на Земле : высокий уровень мутаций (ошибок репликации) из-за примитивности и несовершенства механизмов репликации генетического материала, свободный обмен генетическим материалом между предшественниками клеток - "прогенотами" - и коммунальный характер бытия этих предшественников, когда любые продукты и инновации одних становились достоянием всех ("от каждого по способностям - каждому по потребностям"). Однако, в отличие от гипотезы К. Вуза, я бы предпочел отдать роль Универсального Предшественника доклеточной - бесклеточной - форме существования мира РНК, когда еще не было ни ДНК, ни механизмов синтеза белка. Универсальным Предшественником могло быть как раз коммунальное сообщество колоний-ансамблей РНК, существующих и размножающихся на твердых или гелеобразных поверхностях первобытной Земли, не ограниченных физически никакими мембранами и фазовыми разделами и потому свободно обменивающихся как генетическим материалом, так и продуктами катализируемых реакций.

Эта коммунальная форма существования мира РНК - своего рода Солярис, - как уже указывалось, должна была очень быстро эволюционировать. Во всяком случае, весь путь эволюции до индивидуальных организмов с клеточной структурой, ДНК и современным аппаратом белкового синтеза был пройден, по-видимому, менее чем за полмиллиарда лет (период от 4 млрд. до 3.5 млрд. лет назад). Совершенствование колоний-ансамблей РНК за счет естественного отбора должно было происходить в направлении как улучшения каталитических механизмов, так и увеличения точности репликации и наследования. Колонии РНК, "научившиеся" делать белковые катализаторы, естественно, приобретали громадное преимущество перед другими в скоростях и качестве катализируемых реакций и потому быстро вытесняли "неумелых" - как за счет конкуренции, так и за счет передачи им этой способности. На базе РНК появлялся и совершенствовался аппарат белкового синтеза, а ввиду коммунального и пандемического характера мира РНК вырабатывался универсальный генетический код.

Однако кодируемый синтез белков требовал повышенной точности репликации генетического материала и упорядочивания продукции разных белков. Это привело к необходимости дифференциации части РНК (генетической РНК) и ее модификации в ДНК, обладающей способностью к более точному копированию, а к тому же и существенно большей химической стабильностью, чем РНК. Наконец, эффективность и устойчивость таких систем могла быть значительно повышена за счет их обособления от окружающей среды, и они окружаются мембранами белково-липидной природы. Коммунальный мир распадается на индивидуальные, но высоко эффективные ячейки - клетки, особи, организмы, и начинается их собственная эволюция и собственные родословные. Из коммунального Универсального Предшественника выходят две основные ветви микроорганизмов - бактерии (эубактерии) и ар-хеи (архебактерии), формируются их клеточные сообщества на основе взаимодействия их метаболизмов, а затем их симбиотические отношения приводят к появлению химер, и возникают первые эукарии - предшественники высших эукариотических организмов.

Что же стало с миром РНК после распада коммуны? Хотя коммуна распалась, мир РНК сохранился в каждой клетке каждого живого организма. Основой современной жизни является наследуемый биосинтез белков, который определяет все признаки ныне существующих живых организмов. В качестве центрального звена этого процесса биосинтеза белков выступает совокупность взаимодействующих друг с другом молекул РНК различных типов, прежде всего рибосомной РНК, формирующей аппарат белкового синтеза, тРНК, доставляющей в рибосому активированные аминокислоты для построения полипептид-ных цепей белков, и мРНК, несущей в своей нук-леотидной последовательности программу для синтеза белка (см. , рис. 1). Кроме этих трех основных представителей внутриклеточного мира РНК, обнаружен целый ряд минорных РНК, обеспечивающих процессы редупликации ДНК и наследования, копирования генов и формирова-

ния мРНК, регуляции синтеза белков, транспорта белков через мембраны, регуляции эмбриогенеза и клеточной дифференцировки, детерминации продолжительности жизни, и так далее. Каждый год открываются все новые виды минорных РНК в клетках современных организмов, выявляется их важнейшая роль в жизни организмов .

Еще до недавнего времени мы очень мало знали о внутриклеточном мире РНК, и сейчас происходит серьезная переоценка относительного вклада негенетических РНК в функционирование живых систем. Можно сказать, что совокупность молекул РНК - мир РНК - по-прежнему составляет ядро жизни. Современная жизнь - это РНК. передавшая часть своих генетических функций рожденному ею же родственному полимеру - ДНК, и синтезирующая белки для всеобъемлющего эффективного функционирования содержащих ее компартментов - клеток и многоклеточного организмов.

ЛИТЕРАТУРА

1. Kiesel A., Belozersky A. Uber die Nucleinsaure und die Nucleoproteide der Erbsenkeime // Hoppe-Seyler"s Z. physiol. Chemie. 1934. Bd. 229. H. 4-6. S. 160-166.

2. Белозерский A .H., Дубровская И.И. О белках и тимонуклеиновой кислоте семян конского каштана // Биохимия. 1936. Т. 1. С. 665-675.

3. Caspersson Т., Landstrom-Hyden H., Aquilonius L. Cytoplasmanukieotide in eiweissproduzierenden Drusenzellen//Chromosoma. 1941. Bd. 2. S. Ill-131.

4. Bracket J. La detection histochimique et le microdosage des acides pentosenucleiques // Enzymologia. 1941-1942, V. 10. P. 87-96.

5. Avery О.Т., MacLeod CM., McCarty M. Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types // J. Exp. Med. 1944. V. 78. P. 137-158.

6. Спирин А.С. Современная биология и биологическая безопасность // Вестник РАН. 1997. № 7.

7. Chargaff E. Chemical specificity of nucleic acids and mechanism of their enzymatic degradation // Experientia. 1950. V. 6. P. 201-209.

8. Chargaff E. Structure and function of nucleic acids as cell constituents // Federation Proc. 1951. V. 10. P. 654-659.

9. Wilkins M.F.H., Stokes A.R., Wilson H.R. Molecular structure of deoxypentose nucleic acids // Nature. 1953. V. 171. P. 738-740.

10. Franklin R.E., Gosling R.G. Molecular configuration in sodium thymonucleate // Nature. 1953. V. 171. P. 740-741.

11. Watson J. D., Crick F. H. C. Molecular structure of nucleic acids: A structure for deoxyribose nucleic acid // Nature. 1953. V. 171. P. 737-738.

12. Watson J. D., Crick F. H. C. Genetic implications of the structure of desoxyribose nucleic acid // Nature. 1953. V. 171. P. 964-967.

13. Спирин А.С. Биосинтез белков, мир РНК и происхождение жизни // Вестник РАН. 2001. № 4.

14. Спирин А.С., Белозерский А.Н., Шугаева Н.В., Ванюшин Б.Ф. Изучение видовой специфичности нуклеиновых кислот у бактерий // Биохимия. 1957. Т. 22. С. 744-754.

15. Belozersky A.N., Spirin A.S. A correlation between the compositions of the desoxyribonucleic and ribonucleic acids//Nature. 1958. V. 182. P. 111-112.

16. Crick F.H.C. The present position of the coding problem // Brookhaven Symposia in Biology. 1959. № 12. P. 35-39.

17. Volkin E., Astrachan L. Phosphorus incorporation in Escherichia coli ribonucleic acid after infection with bacteriophage T2 //Virology. 1956. V. 2. P. 149-161.

18. Jacob F., Monod J. Genetic regulatory mechanisms in the synthesis of proteins // J. Mol. Biol. 1961. V. 3. P. 318-356.

19. Спирин А.С., Белицина Н.В., Айтхожин М.А. Информационные РНК в раннем эмбриогенезе // Журнал общей биологии. 1964. Т. 25. С. 321-338.

20. Spirin A.S. Informosomes //European J. Biochem. 1969. V. 10. P. 20-35.

21. Spirin A.S. On "masked" forms of messenger RNA in early embryogenesis and in other differentiating systems // Current Topics in Developmental Biology. 1966. V. 1. P. 1-38.

22. Spirin A.S. Masked and translatable messenger ribonucleoproteins in higher eukaryotes // Translational Control / Eds. Hershey J.W.B., Mathews M.B., Sonenberg N., N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1996. P. 319-334.

23. Brenner S., Jacob F., Meselson M. An unstable intermediate carrying information from genes to ribosomes for protein synthesis//Nature. 1961. V. 190. P. 576-581.

24. Gros F., Gilbert W., Hiatt H. et al. Unstable ribonucleic acid revealed by pulse labeling of Escherichia coli // Nature. 1961. V. 190. P. 581-585.

25. Spiegelman S. The relation of informational RNA to DNA // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1961. V. 26. P. 75-90.

26. Богданова E.G., ГавриловаЛ.П.,Дворкин Г.А., Киселев Н.А., Спирин А.С. Изучение макромолеку-лярной структуры высокополимерной (рибосо-мальной) рибонуклеиновой кислоты из Escherichia coli // Биохимия. 1962. Т. 27. С. 387-402.

27. Spirin A.S. Some aspects of macromolecular structure of high-polymer RNA in solution // Acides ribonucleiques et polyphosphates: Structure, synthese et functions / Eds. Ebel J.P., Grunberg-Manago M. Paris: Editions du CNRS, 1962. P. 73-87.

28. Hall B.D., Doty P. The preparation and physical chemical properties of ribonucleic acid from microsomal particles // J. Mol. Biol. 1959. V. 1. P. 111-126.

29. Спирин А.С., ГавриловаЛ.П., Бреслер С.Е., Мосевицкий М.И. Изучение макромолекулярной структуры инфекционной рибонуклеиновой кислоты из вируса табачной мозаики // Биохимия. 1959. Т. 24. С. 938-947.

30. Spirin A.S. On macromolecular structure of native high-polymer ribonucleic acid in solution // J. Mol. Biol. 1960. V. 2. P. 436-446.

31. Vasiliev V.D., Selivanova O.M., Koteliansky V.E. Specific self-packing of the ribosomal 16S RNA // FEBS Letters. 1978. V. 95. P. 273-276.

32. Vasiliev V.D., Serdyuk I.N., Gudkov А.Т., Spirin A.S. Self-organization of ribosomal RNA // Structure, Function, and Genetics of Ribosomes / Eds. Hardesty B., KramerG. N.Y.: Springer-Verlag, 1986. P. 128-142.

33. Спирин А.С., Киселев Н.А., Шакулов Р.С., Богданов А.А. Изучение структуры рибосом: Обратимое разворачивание рибосомных частиц в рибо-нуклеопротеидные тяжи и модель укладки // Биохимия. 1963. Т. 28. С. 920-930.

34. Lerman M.I., Spirin A.S., Gavrilova L.P., Golov V.F. Studies on the structure of ribosomes: II. Stepwise dissociation of protein from ribosomes by caesium chloride and the re-assembly of ribosome-like particles // J. Mol. Biol. 1966. V. 15. P. 268-281.

35. Gavrilova L.P., lvanov DA., Spirin A.S. Studies on the structure of ribosomes: III. Stepwise unfolding of the 50S particles without loss of ribosomal protein // J. Mol. Biol. 1966. V. 16. P. 473-489.

36. Wimberly B.T., Brodersen D.E., Clemons W.M. et al. Structure of the 30S ribosomal subunit // Nature. 2000. V. 407. P. 327-339.

37. Schlunzen F., Tocilj A., Zarivach R. et al. Structure of functionally activated small ribosomal subunit at 3.3 angstroms resolution // Cell. 2000. V. 102. P. 615-623.

38. Ban N., Nissen P., Hansen J. et al. Editions du CNRS, The complete atomic structure of the large ribosomal subunit at 2.4 E resolution // Science. 2000. V. 289. P. 905-920.

39. Yusupov MM., Yusupova G.Zh., Baucom A. et al. Crystal structure of the ribosome at 5.5 A resolution // Science. 2001. V. 292. P. 883-896.

40. Cundliffe E. Involvement of specific portions of ribosomal RNA in defined ribosomal functions: A study utilizing antibiotics // Structure, Function, and Genetics of Ribosomes / Eds. Hardesty B., Kramer G. N.Y.: Springer-Verlag, 1986. P. 586-604.

41. Fourmy D., Recht M.I., Blanchard S.C., Puglisi J.D. Structure of the A site of E. coli 16S rRNA complexed with an aminoglycoside antibiotic // Science. 1996. V. 274. P. 1364-1371.

42. Puglisi J.D., Williamson J.R. RNA interaction with small ligands and peptides // The RNA World, Second Edition / Eds. Gesteland R.F., Cech T.R., Atkins J.F. N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1999. P. 403^25.

43. Ellington A., SzostakJ. In vitro selection of RNA molecules that bind specific ligands // Nature. 1990. V. 346. P. 818-822.

44. Tuerk С., Gold L. Systematic evolution of ligands by exponential enrichment // Science. 1990. V. 249. P. 505-510.

45. GoldL., Polisky B., Uhlenbeck 0., Yarus M. Diversity of oligonucleotide functions // Annual Review Biochem. 1995. V. 64. P. 763-797.

46. Kruger К., Grahowski P.J., Zaug A.J. et al. Self-splicing RNA: Autoexcision and autocyclization of the ribosomal RNA intervening sequence of Tetrahyrnena // Cell. 1982. V. 31. P. 147-157.

47. Guerrier-Takada С., Gardiner К., March Т. et al. The RNA moiety of ribonuclease P is the catalytic subunit of the enzyme // Cell. 1983. V. 35. P. 849-857.

48. Cech T.R., Golden B.L. Building a catalytic active site using only RNA // The RNA World. Sec. Ed./Eds. Gesteland R.F., Cech T.R., Atkins J.F. N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1999. P. 321-347.

49. Noller H.F., Hoffarth V., Zimniak L. Unusual resistance of peptidyl transferase to protein extraction methods // Science. 1992. V. 256. P. 1416-1419.

50. Nissen P., Hansen J., Ban N. et al. The structural basis of ribosome activity in peptide bond synthesis // Science. 2000. V. 289. P. 920-930.

51. Ahlquist P. RNA-dependent RNA polymerase, viruses, and RNA silencing // Science. 2002. V. 296. P. 1270-1273.

52. Gilbert W. The RNA world // Nature. 1986. V. 319. P. 618.

53. Gilbert W., de Souza SJ. Introns and the RNA world // The RNA World. Sec. Ed./Eds. Gesteland R.F., Cech T.R., Atkins J.F. N.Y.: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1999. P. 221-231.

54. Chetverin A.B., Chetverina H.V., Munishkin A.V. On the nature of spontaneous RNA synthesis by Q{3 replicase // J. Mol. Biol. 1991. V. 222. P. 3-9.

55. Chetverina H.V., Chetverin A.B. Cloning of RNA molecules in vitro // Nucleic Acids Research. 1993. V. 21. P. 2349-2353.

56. Chetverina H.V., Demidenko А.А., Ugarov V.I., Chetverin A.B. Spontaneous rearrangements in RNA sequences // FEBS Letters. 1999. V. 450. P. 89-94.

57. Woese C.R. The universal ancestor // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 6854-6859.

58. Storz G. An expanding universe of non-coding RNAs // Science. 2002. V. 296. P. 1260-1263.

Основной функцией ДНК является ее способность к самоудвоению (репликации). Репликация - очень точный механизм, практически не допускающий ошибок. В самой ДНК (у некоторых вирусов - в РНК) закодирована информация о структуре ферментов, осуществляющих удвоение нуклеиновых кислот, синтез новых нуклеотидов - строительную базу репликации, исправление ошибок репликации, а также репарацию повреждений ДНК, вызванных разными факторами. Наконец, сама структура ДНК, а именно наличие двух цепей в ее составе, является условием, облегчающим процесс копирования, поскольку в таком случае каждая из цепочек может выполнять роль матрицы при синтезе новых молекул ДНК. Подобное предположение высказали Джеймс Уотсон и Фрэнсис Крик еще в 1953 г., и оно получило экспериментальное подтверждение. Такой механизм копирования ДНК, когда каждая из цепей выполняет функцию шаблона, а вновь синтезированные молекулы являются гибридными (состоят из одной старой и одной новой цепей), называется полуконсервативным .

Кроме полуконсервативной, были предложены еще две модели репликации: консервативная и дисперсивная . Особенности этих моделей репликации ДНК состоят в следующем. Согласно дисперсивной модели, родительская спираль ДНК при удвоении разрывается на каждом полуобороте путем множественной фрагментации, а синтез новых цепей происходит на фрагментах (рис. 1.9). По консервативной модели раскручивания спирали ДНК не происходит вовсе, и она служит матрицей для двух новых цепей, в результате чего родительская спираль целиком состоит из старого, а дочерняя - из нового материала. Доказательство реальности полуконсервативного механизма репликации ДНК предоставили Месельсон и Сталь в 1958 г. в экспериментах с ультрацентрифугированием меченой бактериальной ДНК.

Суть этих экспериментов состояла в следующем: ДНК E.coli метили радиоактивным изотопом 15 N, а затем давали осуществиться одному раунду репликации ДНК, выращивая клетки в течение ~ 50 мин на питательной среде, содержащей нормальный изотоп азота - 14 N. Выделенную из клеток ДНК подвергали ультрацентрифугированию в градиенте плотности хлористого цезия. При таком центрифугировании молекулы CsCl создают в пробирке градиент плотности, и молекулы других веществ распределяются в этом градиенте в соответствии со своей плотностью. ДНК E.coli, выращенных на среде, содержащей 15 N, имеет плотность 1,724 г/см 3 , тогда как ДНК клеток, выращенных на обычной среде с изотопом 14 N, характеризуется плотностью 1,710 г/см 3 . Таким образом, смесь этих двух типов ДНК легко разделяется при центрифугировании по плотности. Локализацию ДНК в пробирке с градиентом CsCl можно определить по поглощению ультрафиолетовых лучей (ДНК поглощает излучение с длиной волны 260 нм). Таким образом, ДНК в пробирке выявляется в виде «полос» - «легкая» у верхнего края пробирки, «тяжелая» - ближе ко дну. В данном эксперименте в пробирке с градиентом хлористого цезия образовалась всего одна, средняя по «тяжести» полоса, положение которой соответствовало гибридной ДНК, включающей оба изотопа азота - 15 N и 14 N. Это обстоятельство исключало возможность реализации только одной модели репликации ДНК -консервативной. Для выбора между оставшимися двумя моделями репликации Месельсон и Сталь позволили бактериям, ДНК которых содержала оба изотопа, совершить еще одно деление на среде с 14 N. Затем их ДНК снова подвергли ультрацентрифугированию. На этот раз в пробирке сформировалось две полосы ДНК - «легкая» и средняя по «тяжести», что подтверждает справедливость полуконсервативного механизма репликации ДНК.

Итак, все изученные к настоящему времени способы репликации нуклеиновых кислот сводятся к полуконсервативному механизму, согласно которому после каждого раунда репликации одна нить в каждой из двух дочерних молекул является родительской, т. е. консервативной, а другая - синтезированной заново. Репликация одно- и двухцепочечных нуклеиновых кислот, представляющих геномы разных организмов, осуществляется с соблюдением определенных закономерностей при реализации разных механизмов, которые рассмотрены ниже. Общим для всех этих процессов является: 1) участие сложного комплекса ферментов, которые осуществляют репликацию; 2) наличие трех основных стадий процесса - инициации, элонгации и терминации; 3) соблюдение принципа комплементарности при построении новых цепей, при котором шаблоном (матрицей) служит родительская цепочка; 4) высокая точность процесса; 5) возможность исправления ошибок репликации в ходе корректорской правки .

Репликация двухцепочечных ДНК . Двухцепочечные ДНК формируют геномы всех клеточных организмов - и прокариот и эукариот. Наилучшим образом механизм репликации ДНК изучен по отношению к прокариотическим клеткам, в частности бактерий E.coli. В экспериментах с прокариотами показано, что в условиях, ограничивающих синтез белка, репликация ДНК не происходит, из чего можно сделать вывод, что этот процесс нуждается в участии белков. В настоящее время показано, что в процессе репликации ДНК участвуют продукты более чем 10 генов. Это, в первую очередь, ДНК-полимеразы , а также топоизомеразы , геликазы и лигазы . Появляется все больше данных в пользу участия в процессе репликации ДНК высокоорганизованного мультиферментного комплекса -реплисомы , включающей праймосомо-праймазный комплекс, геликазы, Pol III-холофермент и гиразы.

ДНК-полимеразы - это ключевые ферменты репликативного процесса, которые собственно и осуществляют наращивание полинуклеотидных цепей, используя принцип комплементарности. Наиболее полно изучены ДНК-полимеразы кишечной палочки. В клетках этих бактерий обнаружено три различных типа ДНК-полимераз (Pol-I, Pol-II и Pol-III), которые различаются в первую очередь скоростью катализа и нуклеазной активностью. ДНК-полимераза I (Pol-I) представляет собой одиночный полипептид, содержащий порядка 1000 аминокислотных остатков. В клетке E.coli насчитывается около 400 молекул этого фермента. Pol-I обладает следующими активностями: полимеразной - присоединение комплементарных матричной цепи дезоксинуклеотидов к свободной 3’-ОН-группе праймера в направлении от 5’- к 3’-концу (5’→3’) строящейся молекулы ДНК; экзонуклеазной - гидролиз фосфодиэфирных связей (отщепление нуклеотидов) в одной цепи ДНК или на неспаренном конце дуплексной ДНК, начиная с 3ў-конца цепи (3’→ 5’) и 5’-конца цепи (5’→3’). Экзонуклеазные активности играют очень большую роль в репликации и репарации хромосомной ДНК E.coli. 3’→5’-экзонуклеазная активность обеспечивает контроль за присоединением каждого нуклеотида и удаление ошибочных нуклеотидов с растущего конца цепи (корректорская правка), а 5’→3’-экзонуклеазная активность используется для удаления димеров пиримидинов и рибонуклеотидов фрагментов Оказаки .

ДНК-полимераза II (Pol-II) присутствует в клетках кишечной палочки в значительно меньшем числе копий и осуществляет полимеразную активность гораздо медленнее, чем Pol-I (составляет только 5% активности ДНК-полимеразы I). В отличие от Pol-I этот фермент не обладает 5’→3’-экзонуклеазной активностью. Роль этой полимеразы в репликации до конца не выяснена. Считается, что этот фермент не обязателен для репликации ДНК, но может заменять отдельные функции Pol-I при ее повреждении.

ДНК-полимераза III (Pol-III) - основной фермент, ответственный за репликацию хромосомальной ДНК E.coli. В каждой клетке содержится только 10-20 молекул этого фермента, но работает он примерно в 60 раз быстрее ДНК-полимеразы I. Кроме того, Pol-III обладает повышенным сродством к матрице и обеспечивает более высокую эффективность копирования. Для данного фермента, так же как и для Pol-II, не присуща 5’→3’-экзонуклеазная активность. Поэтому для репликации отстающей цепи необходимо участие Pol-I, чтобы произошло удаление РНК-праймеров на 5’-конце фрагментов Оказаки.

В эукариотических клетках выявлено большее количество ДНК-полимераз, но их функции изучены хуже.

Функция топоизомераз сводится к разрешению механических и топологических проблем в процессе раскручивания двойной спирали в репликативной вилке. Эти ферменты изменяют степень сверхспирализации и приводят к образованию «шарнира», который создает условия для непрерывного движения репликативной вилки. В различных организмах идентифицированы топоизомеразы двух основных типов: топоизомеразы типа I надрезают одну из двух цепей, в результате чего концевой участок двойной спирали может повернуться вокруг интактной цепи, и затем воссоединяют концы разрезанной цепи. Топоизомеразы типа II вносят временные разрывы в обе комплементарные цепи, изменяют степень сверхспирализации, а затем соединяют разорванные концы.

Геликазы осуществляют образование и продвижение вдоль спирали ДНК репликативной вилки - участка молекулы с расплетенными цепями. Эти ферменты используют для расплетения цепей энергию, высвобождающуюся при гидролизе АТР. Для обеспечения более высокой скорости раскручивания несколько геликаз действуют в комплексе с белками второго типа, которые связываются с одноцепочечными участками молекулы и тем самым стабилизируют расплетенный дуплекс .

Наконец, ДНК-лигазы катализируют процессы воссоединения фрагментов цепей ДНК, участвуя в образовании ковалентных связей (фосфодиэфирных мостиков) между 5’-P- и 3’-ОН-группами соседних дезоксирибонуклеотидов. Эти ферменты также используют энергию макроэргических связей, образующуюся при гидролизе АТР или GTP.

Механизм репликации двухцепочечной ДНК лучше всего исследован для бактерий E.coli и будет рассмотрен на данном примере. Инициация репликации Д НК. Процесс репликации ДНК кишечной палочки начинается в строго определенной точке, которая называется origin (ori), или точкой начала репликации, и расположена на 85 мин. генетической карты хромосомы этих бактерий. В ori репликации на ДНК действуют ферменты (топоизомеразы, геликазы), обусловливающие формирование репликативной вилки, в которой собственно и происходит копирование цепей. Для репликации необходимо наличие: ДНК-матрицы в виде одноцепочечного участка ДНК, смеси дезоксирибонуклеозидтрифосфатов, реплисомы (ансамбля ферментов, принимающих участие в репликации) и 3’-ОН–группы нуклеиновой кислоты -затравки, к которой ДНК-полимераза должна присоединять следующий нуклеотид. Дело в том, что ни одна из ДНК-полимераз не может начинать процесс полимеризации нуклеотидов de novo. Эту функцию выполняют РНК-полимеразы, которые узнают ori репликации в репликативной вилке и синтезируют коротенькие (10-60 рибонуклеотидов) последовательности - РНК-затравки (праймеры). При этом синтез затравок осуществляется в направлении от 5’- к 3’-концу, и в результате образуется свободный 3’-ОН-конец, который может использовать ДНК-полимераза для продолжения процесса полимеризации цепей на стадии элонгации репликации (рис. 1.10).

Элонгация репликации ДНК. Синтез новых цепей ДНК осуществляется с соблюдением принципа комплементарности: каждый подбираемый в растущую цепь нуклеотид должен быть комплементарен соответствующему (расположенному напротив) нуклеотиду в исходной (матричной) цепи.

Поскольку все ДНК-полимеразы осуществляют процесс полимеризации нуклеотидов только в одном направлении (5’→3’), а репликативная вилка движется вдоль ДНК в обоих направлениях, непрерывно синтезироваться в каждом из направлений может лишь одна нить, которую называют лидирующей . Вторая (противоположная) нить синтезируется короткими фрагментами (фрагменты Оказаки) и называется отстающей (рис. 1.10). Фрагменты Оказаки у прокариот содержат порядка 1000 нуклеотидов, а у эукариот - 100-200 нуклеотидов.

Кроме полимеризации цепей, которую осуществляет в основном ДНК-полимераза III, в процессе репликации ДНК происходят следующие события:

Вырезание РНК-затравок из лидирующей цепи и из каждого фрагмента Оказаки. Эту функцию выполняет Pol-I с помощью своей 5’→3’-экзонуклеазной активности;

Заполнение “брешей”, оставшихся после вырезания РНК-затравок. Эту работу также осуществляет ДНК-полимераза I, используя свободную 3’-ОН–группу соседнего фрагмента Оказаки;

Соединение фрагментов ДНК в отстающей цепи с помощью фермента ДНК-лигазы: когда растущий 3’-гидроксильный конец каждого фрагмента Оказаки доходит до 5’-дезоксинуклеотидного конца соседнего фрагмента, вступает в действие ДНК-лигаза и образуется непрерывная отстающая цепь;

Исправление ошибок репликации - корректорская правка. Этот механизм характерен как для Pol-I, так и для Pol-III и основывается на их 3’→5’-экзонуклеазной активности. Известно, что ДНК-полимераза проверяет комплементарность подбираемого нуклеотида, контролируя размер новой предполагаемой пары нуклеотидов в своем активном центре, и ее полимеразная активность включается лишь тогда, когда эта комплементарность установлена. С другой стороны, каждый вновь встроенный нуклеотид также проверяется на соответствие своей паре в активном центре фермента. Если размер образовавшейся пары нуклеотидов не соответствует истинному (когда основания противоположных нуклеотидов не комплементарны друг другу), с помощью своей 3’→5’-экзонуклеазной активности фермент вырезает некомплементарный нуклеотид и ищет ему замену. Дополнительным механизмом, уменьшающим ошибки репликации, служит репарация ДНК. В результате частота ошибочного включения нуклеотидов в образующуюся при репликации цепь ДНК крайне низка (10 -8 -10 -10).

Терминaция репликации. При двунаправленной репликации кольцевого генома (как у кишечной палочки) репликативные вилки встречаются на расстоянии 180° от точки репликации, и в этом месте репликация завершается. Кольцевые ДНК в месте встречи соединяются лигазой, при этом они оказываются попарно сцепленными, и в дальнейшем происходит их разделение на отдельные геномы с помощью топоизомеразы типа II.

Скорость репликации ДНК у бактерий E.coli составляет примерно 1500 пар нуклеотидов в секунду. Таким образом, полный геном кишечной палочки (4*10 6 п. н.) реплицируется примерно за 40 мин. Однако клетки E.coli делятся быстрее - каждые 20 мин, и это означает, что при прежней скорости копирования увеличивается частота актов инициации в той же самой точке начала репликации. Т. е. еще до завершения первого раунда репликации генома в сайте ori инициируется второй раунд репликации. Скорость движения репликативной вилки в эукариотических клетках значительно меньше (10-100 п.н. в секунду), но завершение репликации в разумное время обеспечивается одновременной инициацией во множестве точек. В результате хромосома дрозофилы, например, содержащая 6,5*10 7 п.н., реплицируется за несколько минут.

В целом закономерности репликации, выявленные для прокариот, характерны и для большинства эукариотических геномов. Отличия состоят, в первую очередь, в наличии у эукариот множества сайтов инициации репликации на каждой хромосоме, иных, чем у прокариот, механизмах исправления ошибок репликации, а также в ферментативном оснащении процесса репликации. Схематическое изображение процессов репликации циклических, формирующих геномы прокариот и плазмид, и линейных (эукариотических) геномов представлены на рис. 1.11.

В линейной ДНК раскручивание цепей осуществляется путем вращения одной цепи вокруг другой. В кольцевой ДНК раскручивание и репликация ведут к образованию структуры, напоминающей кольцо с внутренней петлей. Ее называют тэта-петлей , поскольку по форме она похожа на греческую букву Q. Такие петли можно наблюдать на радиоавтографах реплицирующихся бактериальных ДНК, что впервые осуществил Кэрнс для ДНК E.coli. Приведенный механизм двунаправленной репликации ДНК является наиболее распространенным, но не единственным. ДНК фагов Р22, 186, Р2, а также фагов Т4 и l на поздних стадиях литического цикла реплицируется по однонаправленному механизму (тип катящегося кольца ). В этом случае двухцепочечная кольцевая ДНК надрезается специфическим ферментом в уникальном сайте одной цепи (точке начала катящегося кольца). Образовавшийся в результате надреза 5’-конец цепи связывается с ферментом, осуществившим надрез. Синтез ДНК начинается с вытеснения 5’-конца, связанного с ферментом, в раствор, что позволяет ДНК-полимеразе присоединять нуклеотиды к 3’-ОН-концу. Происходит полуконсервативная репликация, в ходе которой 5’-конец разорванной цепи вытесняется в виде свободного хвоста и его длина все увеличивается, а матрицей служит интактная замкнутая цепь. Эту реплицирующуюся структуру (рис. 1.12) называют катящимся кольцом, так как разматывание свободной одиночной цепи сопровождается вращением двухцепочечной матрицы вокруг своей оси.

Если этот механизм используется для репликации двухцепочечной ДНК, то 5’-концевые хвосты служат матрицами для синтеза небольших фрагментов ДНК, которые сразу же сшиваются вместе под действием ДНК-лигазы. В результате растущие хвосты вскоре после своего образования приобретают двухцепочечную структуру. Элонгация хвостов приводит иногда к

тому, что их длина многократно превышает общую длину исходной кольцевой молекулы. Такой способ репликации использует, например, фаг l. При упаковке ДНК в капсиды в специальных участках, называемых cos-сайтами и отстоящих друг от друга на длину вирусного генома, образуются надрезы, в результате чего длинные дуплексы многократно повторенной фаговой ДНК расчленяются на фрагменты, соответствующие по размерам зрелой ДНК, обнаруживаемой в вирионах бактериофага l. Репликация по типу катящегося кольца характерна также для образования копии бактериальной хромосомы E.coli Hfr и фактора F + , передающихся при конъюгации в реципиентную клетку.

Репликация одноцепочечных ДНК . У фагов М13 или fХ174, чьи зрелые геномы представлены одиночными кольцевыми ДНК, репликация осуществляется по механизму катящегося кольца (рис. 1.12). Это происходит на поздних стадиях инфекционного процесса, после того, как

инфицирующая ДНК превращается в двухцепочечную кольцевую форму. В данном случае не осуществляется репликация 5’-концевых участков, в отличие от репликации геномов фага l (рис. 1.12, поз. 5), поэтому продуктом репликации являются длинные одиночные цепи ДНК, постоянно отделяющиеся от «катящегося рулона» Эти цепи надрезаются в каждой точке начала репликации и замыкаются с образованием зрелых кольцевых форм, упаковываемых в капсиды.

Репликация РНК. Образование РНК-содержащих вирусов происходит путем репликации их РНК, тогда как все клеточные РНК образуются в результате транскрипции ДНК. За исключением ретровирусов репликация РНК в основном повторяет процесс репликации ДНК. Как и при репликации ДНК, порядок расположения нуклеотидов определяется комплементарным копированием матрицы, в данном случае обязательно цепи РНК. Ферменты, осуществляющие этот процесс, называются РНК-зависимыми репликазами . РНК бактериальных вирусов R17 и MS2, а также полиовирусов и вируса Синдбис, инфицирующих животных, всегда обозначается знаком (+), поскольку последовательность их РНК-геномов идентична последовательности мРНК. Таким образом, геном инфицирующего вируса может служить в качестве мРНК и содержит информацию о синтезе некоторых, если не всех, вирусных белков. Специфическая репликаза, кодируемая геномом вируса и образующаяся вскоре после инфекции, связывается с одним или несколькими белками клетки-хозяина и инициирует процесс копирования (+)-цепи с ее 3’-конца с образованием полной (-)-цепи, ассоциированной с (+)-цепью-матрицей. Затем та же репликаза синтезирует множество копий (+)-цепи РНК, используя новосинтезированную (-)-цепь в качестве матрицы. Геномы некоторых вирусов (вирус везикулярного стоматита, гриппа) представлены одной или несколькими (-)-цепями. В этом случае они служат матрицами для синтеза (+)-цепей, которые играют роль мРНК и используются при синтезе дочерних (-)-цепей.

Отличительной особенностью репликации геномов ретровирусов является то, что после проникновения их РНК в клетку хозяина вирусный геном подвергается обратной транскрипции. При этом сначала образуется дуплекс РНК-ДНК, а затем - двухцепочечная ДНК. Фермент, катализирующий комплементарное копирование РНК с образованием ДНК, называется обратной траскриптазой (ревертазой ). Он содержится в ретровирусных частицах (вирионах) и активируется после попадания в клетку. Появляется все больше данных о том, что обратная транскрипция происходит в самых разных эукариотических клетках, а обратная транскриптаза играет важную роль в процессах перестройки генома. Репликация двухцепочечной формы ретровирусной ДНК не начинается до тех пор, пока она не встроится в клеточную ДНК. Механизм рекомбинационного встраивания пока полностью не установлен. После интеграции ретровирусная ДНК реплицируется как часть клеточной ДНК. РНК дочерних вирионов образуется в результате транскрипции интегрированных копий вирусной ДНК.

Нуклеиновые кислоты были открыты в 1868 г. швейцарским ученым Ф. Мишером.
В организмах существует несколько видов нуклеиновых кислот, которые встречаются в различных органоидах клетки – ядре, митохондриях, пластидах.
К нуклеиновым кислотам относятся ДНК, и-РНК, т-РНК, р-РНК .

Дезоксирибонуклеиновая кислота (ДНК)

– линейный полимер, имеющий вид двойной спирали, образованной парой антипараллельных комплементарных (соответствующих друг другу по конфигурации) цепей. Пространственная структура молекулы ДНК была смоделирована американскими учеными Джеймсом Уотсоном и Френсисом Криком в 1953 г.
Мономерами ДНК являются нуклеотиды .
Каждый нуклеотид ДНК состоит из пуринового (А – аденин или Г – гуанин) или пиримидинового (Т – тимин или Ц – цитозин) азотистого основания , пятиуглеродного сахара – дезоксирибозы и фосфатной группы .
Нуклеотиды в молекуле ДНК обращены друг к другу азотистыми основаниями и объединены парами в соответствии с правилами комплементарности : напротив аденина расположен тимин, напротив гуанина – цитозин. Пара А – Т соединена двумя водородными связями, а пара Г – Ц – тремя. При репликации (удвоении) молекулы ДНК водородные связи рвутся и цепи расходятся и на каждой из них синтезируется новая цепь ДНК. Остов цепей ДНК образован сахарофосфатными остатками.
Последовательность нуклеотидов в молекуле ДНК определяет ее специфичность , а также специфичность белков организма, которые кодируются этой последовательностью. Эти последовательности индивидуальны и для каждого вида организмов, и для отдельных особей.
Пример :
дана последовательность нуклеотидов ДНК: ЦГА – ТТА – ЦАА.
На информационной РНК (и-РНК) будет синтезирована цепь ГЦУ – ААУ – ГУУ, в результате чего выстроится цепочка аминокислот: аланин – аспарагин – валин.
При замене нуклеотидов в одном из триплетов или их перестановке этот триплет будет кодировать другую аминокислоту, а, следовательно изменится и белок, кодируемый данным геном. Изменения в составе нуклеотидов или их последовательности называются мутацией .

Рибонуклеиновая кислота (РНК)

– линейный полимер, состоящий из одной цепи нуклеотидов. В составе РНК тиминовый нуклеотид замещен на урациловый (У). Каждый нуклеотид РНК содержит пятиуглеродный сахар – рибозу, одно из четырех азотистых оснований и остаток фосфорной кислоты.
Синтезируются РНК в ядре. Процесс называется транскрипция - это биосинтез молекул РНК на соответствующих участках ДНК; первый этап реализации генетической информации в клетке, в процессе которого последовательность нуклеотидов ДНК «переписывается» в нуклеотидную последовательность РНК.
Молекулы РНК формируются на матрице, которой служит одна из цепей ДНК, последовательность нуклеотидов в которой определяет порядок включения рибонуклеотидов по принципу комплементарности. РНК-полимераза, продвигаясь вдоль одной из цепей ДНК, соединяет нуклеотиды в том порядке, который определен матрицей. Образовавшиеся молекулы РНК называют транскриптами .
Виды РНК.
Матричная или информационная РНК. Синтезируется в ядре при участии фермента РНК-полимеразы. Комплементарна участку ДНК, на котором происходит синтез. Ее функция – снятие информации с ДНК и передача ее к месту синтеза белка – на рибосомы. Составляет 5% РНК клетки.
Рибосомная РНК – синтезируется в ядрышке и входит в состав рибосом. Составляет 85% РНК клетки.
Транспортная РНК – транспортирует аминокислоты к месту синтеза белка. Имеет форму клеверного листа и состоит из 70-90 нуклеотидов.

Аденозинтрифосфорная кислота – АТФ

– представляет собой нуклеотид, состоящий из азотистого основания аденина, углевода рибозы и трех остатков фосфорной кислоты, в двух из которых запасается большое количество энергии. При отщеплении одного остатка фосфорной кислоты освобождается 40 кДж/моль энергии. Способность запасать такое количество энергии делает АТФ ее универсальным источником. Синтез АТФ происходит в основном в митохондриях.

Таблица. Функции нуклеотидов в клетке.

Таблица. Сравнительная характеристика ДНК и РНК.

Тематические задания.

Часть А

А1 . Мономерами ДНК и РНК являются
1) азотистые основания
2) фосфатные группы
3) аминокислоты
4) нуклеотиды

А2 . Функция информационной РНК:
1) удвоение информации
2) снятие информации с ДНК
3) транспорт аминокислот на рибосомы
4) хранение информации

А3 . Укажите вторую цепь ДНК, комплементарную первой: АТТ – ГЦЦ – ТТГ
1) УАА – ТГГ – ААЦ
3) УЦЦ – ГЦЦ – АЦГ
2) ТАА – ЦГГ – ААЦ
4) ТАА – УГГ – УУЦ

А4 . Подтверждением гипотезы, предполагающей, что ДНК является генетическим материалом клетки, служит:
1) количество нуклеотидов в молекуле
2) индивидуальность ДНК
3) соотношение азотистых оснований (А = Т, Г= Ц)
4) соотношение ДНК в гаметах и соматических клетках (1:2)

А5 . Молекула ДНК способна передавать информацию благодаря:
1) последовательности нуклеотидов
2) количеству нуклеотидов
3) способности к самоудвоению
4) спирализации молекулы

А6 . В каком случае правильно указан состав одного из нуклеотидов РНК
1) тимин – рибоза – фосфат
2) урацил – дезоксирибоза – фосфат
3) урацил – рибоза – фосфат
4) аденин – дезоксирибоза – фосфат

Часть В

В1 . Выберите признаки молекулы ДНК
1) Одноцепочная молекула
2) Нуклеотиды – АТУЦ
3) Нуклеотиды – АТГЦ
4) Углевод – рибоза
5) Углевод – дезоксирибоза
6) Способна к репликации

В2 . Выберите функции, характерные для молекул РНК эукариотических клеток
1) распределение наследственной информации
2) передача наследственной информации к месту синтеза белков
3) транспорт аминокислот к месту синтеза белков
4) инициирование репликации ДНК
5) формирование структуры рибосом
6) хранение наследственной информации

Часть С

С1 . Установление структуры ДНК позволило решить ряд проблем. Какие, по вашему мнению, это были проблемы и как они решились в результате этого открытия?
С2 . Сравните нуклеиновые кислоты по составу и свойствам.